體外培養膀胱癌類器官的方法主要包括以下步驟：

一、制作氣液交互培養系統

在Transwell上室內的多孔培養膜表面制作均勻平鋪的鼠尾膠原支撐層。

用鼠尾膠原溶液重懸新鮮離體的膀胱癌組織，并在混勻后一起加到鼠尾膠原支撐層上，然后放入37℃培養箱使其凝固，制得包含膀胱癌組織的鼠尾膠原層。

二、配制培養基并加入

在Transwell下室內加入類器官培養基，并使培養基液面低于包含膀胱癌組織的鼠尾膠原層。類器官培養基的組成通常包括多種生長因子、激素、營養物質以及抑制劑等，以支持膀胱癌細胞的生長和分化。

三、傳代與凍存

在首次種入樣本2天后，進行傳代操作。將含類器官的鼠尾膠原移入細胞消化液中，置于37℃搖床內孵育一段時間（如2050分鐘），待鼠尾膠原被消化到肉眼不可見而釋放出組織時，終止消化并用基礎培養基洗滌。然后按一定比例（如1:31:5）種入新制作的氣液交互培養系統中進行傳代。

進行第一次傳代后，依據樣本類器官生長情況每隔一定時間（如3~10天）進行一次傳代。

每次消化得到的已長成的類器官可以用凍存液重懸后冷凍保存，以便后續使用。

四、關鍵要點

鼠尾膠原溶液的配制：在冰浴下，向大鼠I型鼠尾膠原中加入適量的培養基和其他成分（如4-羥乙基哌嗪乙磺酸、NaOH、NaHCO3及雙蒸水等），使鼠尾膠原溶液的終濃度達到適當水平（如2.5mg/mL）。

新鮮離體的膀胱癌組織的處理：將獲得的新鮮離體膀胱癌組織修剪去除非腫瘤組織及明顯的壞死組織后，用預冷的含雙抗的PBS沖洗若干遍。然后在無菌環境下切碎至直徑小于0.1mm（即肉糜狀），再用細胞篩網過濾并離心洗滌。

培養條件的控制：在培養過程中需要嚴格控制培養條件，如溫度（37℃）、濕度、氣體環境（如5% CO2）等，以確保膀胱癌細胞的正常生長和分化。

此外，值得注意的是，該方法通過創造性地采用氣液交互培養系統進行膀胱癌類器官的體外培養，使包裹在膠質里的腫瘤細胞充分接觸空氣，避免了類器官在培養過程中容易缺氧的情況，而且明顯提高了細胞活性，使膀胱癌類器官的培養成功率得到顯著提高。同時，該方法在樣品準備時不需要經過酶消化步驟，簡化了操作并減少了細胞損失。

總結

體外培養膀胱癌類器官的方法需要精細的操作和嚴格的培養條件控制。通過該方法可以成功培養出具有生物學功能和結構特征的膀胱癌類器官，為膀胱癌的研究和治療提供有力的工具。